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Título

Carteira de servizos do Servizo de Microbioloxía e Parasitoloxía

Texto destacado

  • CARTERA DE SERVICIOS DE LA ACTIVIDAD URGENTE
    • Técnicas rápidas
      • Examen directo de muestras clínicas/ Tinción de Calcofluor
      • Tinción de Gram.
      • Tinción de BAAR.
      • Diagnóstico en sangre periférica de paludismo. Tinción de Giemsa/ IC.
      • Tinción de tinta china en LCR para diagnóstico de Cryptococcus neoformans
      • Detección de antígeno de Streptococcus pneumoniae en orina y líquidos estériles. IC.
      • Detección de antígeno de Legionella pneumophila serotipo1 en orina. IC.
      • Detección de antígeno de Virus Respiratorio Sincitíal, Metapneumovirus/virus de la influenza A y B en muestras respiratorias. IC/IF/TPX.
      • Detección de la toxina A y B de Clostridium difficile en heces .IC.
      • Detección de antígenos de Rotavirus, Adenovirus y Astrovirus en heces. IC.
      • Detección cualitativa en sangre de anticuerpos frente al VIH 1 y VIH 2. IC.
      • Detección de Pneumocystis jiroveci en esputo inducido y lavado broncoaveolar. IF.
      • Detección de antígenos bacterianos en líquidos cefalorraquídeos.
      • PCR en T real del complejo Mycobacterium tuberculosis
      • PCR en T real de enterovirus y herpervirus en LCR.
    • Procesamiento de muestras
    • Se procesaran las siguientes muestras:

      • Líquidos estériles (LCR, ascítico, pleural, articular, pericárdico, intraocular etc.)
      • Biopsias de tejidos, abscesos, material obtenido por punción aspiración con aguja fina (PAAF) y muestras invasivas.
      • Muestras obtenidas por broncoscopia.
      • Hemocultivos que se positivizan en horario de guardia.
      • Muestras procedentes de pacientes inmunodeprimidos (Hematología, Oncología, Infecciosos, etc.) y de unidades de críticos.
      • Solicitudes con carácter urgente y pactadas con el facultativo de guardia.
      • Todas aquellas muestras, no incluidas en los apartados anteriores, que por razones de viabilidad exigen la siembra de forma inmediata.
    • Realización de informes
      • Preliminares, mediante comunicación verbal con los clínicos de guardia e inclusión del informe en el IANUS, cuando lo considere relevante el FEAS de guardia.
      • Validación de informes definitivos, cuando lo considere pertinente el FEAS de guardia.
  • CARTERA DE SERVICIOS DE LA ACTIVIDAD ORDINARIA
    • BACTERIOLOGÍA
      • Las diferentes técnicas están destinadas a la detección e identificación protocolizada precisa y rápida de bacterias en muestras clínicas.

      • Examen en fresco de productos biológicos.
      • Tinciones: Gram, naranja de acridina  y otras
      • Hemocultivo convencional y lísis centrifugación (Isolator)
      • Cultivo de catéteres IV -cuantitativo-Maki-, cultivo de catéteres y otros dispositivos intravasculares
      • Cultivo de derivaciones de Sistema Nervioso Central
      • Cultivo de material protésico
      • Cultivo de muestras procedentes de cirugía abdominal, cardíaca, torácica, traumatológica, neurológica, ORL, vascular y otros
      • Cultivo de fluidos biológicos estériles: LCR, ascítico, sinovial, pericárdico, pleural y otros
      • Cultivo muestras oftalmológicas
      • Diagnóstico infecciones ORT: óticas, sinusales, nasales y cultivo de exudado faríngeo
      • Diagnóstico de tosferina por cultivo
      • Diagnóstico de infecciones del tracto respiratorio inferior: cultivo selectivo de esputo y broncoaspirado, cultivo cuantitativo de catéter telescopado y lavado broncoalveolar, cultivo de cánulas y tubos endotraqueales. Cultivo cuantitativo en esputo en pacientes con fibrosis quística
      • Cultivo e identificación de Legionella pneumophila
      • Estudio de biopsias. Microbiología de la piel, tejido celular subcutáneo, óseo y punciones con aguja fina
      • Cultivo de Helicobacter pylori
      • Coprocultivo convencional (incluyendo detección de Yersinia, especies de enteropatógenos, Vibrio spp, Aeromonas spp)
      • Cultivo e identificación de bacilos Gramnegativos aerobios y aerobios facultativos a nivel de especie
      • Cultivo e Identificación de Staphylococcus spp
      • Cultivo e identificación de Streptococcus spp
      • Cultivo e Identificación de Corynebacterium spp
      • Cultivo e Identificación de Listeria spp
      • Cultivo e Identificación Bacillus spp.
      • Cultivo e Identificación de Actinomicetos aerobios
      • Cultivo e identificación de bacterias anaerobias
      • Identificación de especies bacterianas mediante detección de proteínas- espectrometría de masas- sistema MALDI-TOF
      • Tipificación bacteriana
    • DETECCIÓN DE ADN/ANTÍGENOS BACTERIANOS EN MUESTRAS CLÍNICAS
      • Detección de ADN bacteriano en sangre, otros líquidos estériles y biopsias por PCR múltiplex a tiempo real
      • Detección de ADN por PCR en tiempo real Mycoplasma pneumoniae
      • Detección de ADN por PCR en tiempo real Bordetella pertussis y Bordetella parapertussis
      • Detección de antígenos bacterianos en LCR y otros líquidos estériles
      • Detección de antígeno de Legionella pneumophila (Muestras de orina mediante IC)
      • Detección de antígeno de Streptococcus pneumoniae en orina mediante IC
      • Detección de antígeno de Streptococcus pyogenes en exudados faríngeo
      • Detección de antígeno de Helicobacter pylori en heces mediante EIA
      • Detección de antígeno y toxinas A y B de Clostridium difficile mediante IC
    • PRUEBAS DE SUSCEPTIBILIDAD BACTERIANA A ANTIMICROBIANOS
      • Técnica mediante difusión Kirby -Bauer y otros protocolos
      • Técnica mediante difusión de E-test
      • Sistemas automatizados de determinación de CMI
      • Detección rápida de la resistencia a la meticilina en S. aureus
      • Detección de beta-lactamasas, plasmídica y cromosómica y semicaracterización
      • Detección de carbapenemasas y semicaracterización
      • Estudios de sinergia antibiótica.
    • CONTROL MICROBIOLÓGICO EN RELACIÓN AL AMBIENTE Y A LA INFECCION ASOCIADA A LA ASISTENCIA SANITARIA
      • En esta sección, se estudian los principales parámetros de propagación de las infecciones intrahospitalarias y su posible control.

      • Estudio de portadores nasofaríngeo: Neisseria meningitidis, Haemophilus sp., Streptococcus pneumoniae y Staphylococcus aureus.
      • Control bacteriológico de portadores en personal laboral
      • Control de colonización/infección de BMR
      • Control microbiológico de esterilización en hornos Pasteur, autoclaves y sistemas por óxido de etileno
      • Control microbiológico de la contaminación de preparaciones procedentes del Servicio de Farmacia (nutriciones parenterales, soluciones antisépticas, fármacos preparados para trasfundir/antitumorales)
      • Control microbiológico de bolsas de transfusión y hemoderivados procedentes del Servicio de Hematología y del Centro de Trasfusiones de Galicia
      • Control microbiológico de muestras procedentes del banco de huesos
      • Control microbiológico de muestras de leche de biberonería y otras procedentes del Servicio de Pediatría
      • Control microbiológico del agua de diálisis procedente del Servicio de Nefrología
      • Control microbiológico de las cabinas de flujo del Servicio de Hematología
      • Control microbiológico del aire en quirófanos y unidades de riesgo
      • Control microbiológico de superficies, aparatos, respiradores y fómites, en unidades de alto riesgo de infección relacionada con el sistema sanitario
      • Tipificación molecular de cepas bacterianas en relación a la infección hospitalaria
    • MICOBACTERIOLOGÍA
      • En la unidad funcional de Micobacterias del Servicio de Microbiología de la XXIS, está integrado el Laboratorio de Referencia de Micobacterias de Galicia (LRMG).

      • Tinciones de ácido alcohol-resistencia en directo y/o previa concentración de la muestra según protocolos
      • Amplificación de ADN/ARN del complejo Mycobacterium tuberculosis mediante PCR en tiempo real
      • Detección mediante técnicas de PCR de genes de resistencia
      • Cultivo en medio líquido y sólido del complejo Mycobacterium tuberculosis de muestras estériles y no estériles
      • Cultivo de micobacterias no tuberculosas (MNT) en medios líquidos automatizados y sólidos, de muestras estériles y muestras no estériles
      • Identificación bioquímica de Mycobacterium spp
      • Identificación genotípica de M.tuberculosis/ M.bovis/ M. bovis BCG/ M. africanum
      • Identificación genotípica de especies de Mycobacterium spp
      • Antibiograma de 1ª línea : isoniazida, rifampicina, etambutol y pirazinamida
      • Antibiohgrama de 2ª línea: estreptomicina, capreomicina, amikacina, etionamida, ofloxacina y PAS
      • Tipificación molecular de cepas por técnica RFLP/ rep PCR
      • Detección de IGRA (IFN-γ release assays) para diagnóstico de la infección tuberculosa
    • MICOLOGÍA
      • Examen en  fresco de las muestras con KOH-glicerol-fucsina ácida y calcofluor y montaje de colonias fúngicas para identificación  y microcultivo
      • Examen de muestras de LCR con tinta china
      • IFI para detección de Pneumocystis jirovecii en esputo inducido y/o lavado broncoalveolar
      • Cultivo e identificación de  hongos levaduriformes
      • Cultivo e identificación de hongos filamentoso de micosis profundas
      • Cultivo e identificación de dermatofitos
      • Identificación de especies fúngicas mediante detección de proteínas- espectrometría de masas- sistema MALDI-TOF
      • Antifungigrama de levaduras
      • Antifungigrama de hongos filamentosos
      • Detección de antígeno de Criptococcus neoformans en suero y LCR
      • Detección de ADN fúngico mediante PCR en t-real multiplex en sangre, detectando A.fumigatus, C.albicans, C.parapsilosis, C.krusei, C.tropicalis y C.glabrata.
      • Detección de antígeno manano de Candida albicans en suero
      • Detección de antígeno galactomanano de Aspergillus spp.
    • PARASITOLOGIA
      • Examen en fresco de muestras (vaginales, jugo duodenal, abscesos, etc)
      • Tinción tricrómica de Gomori (heces, abscesos hepáticos, etc)
      • Tinciones Roamowsky y/o modificaciones en sangre, medula osea y tejidos.
      • Tinción de Giemsa y/o modificaciones en sangre, médula osea y tejidos.
      • Detección de coccidios por tinción de auramina-fenol.
      • Estudio de parásitos en heces: técnica de concentración de Ritchie, flotación y Kato.
      • Tinción mediante IFD de Giardia spp y Cryptosporidium spp.
      • Estudio de hemoparásitos. Inmunocromatografía de Plasmodium spp/ P.falciparum.
      • Estudio de parásitos en orina y otros líquidos orgánicos.
      • Cultivo e identificación de Amebas de vida libre en raspados corneales, lentillas, etc.
      • Cultivo de Leishmania spp.
      • Detección de Ag en orina de Leishmania spp.
      • Detección de Enterobius spp. por la técnica de Graham.
      • Detección de viabilidad de Echinococcus spp. en quistes.
      • Identificación morfológica de helmintos intestinales.
      • Cultivo de larvas de nematodos.
      • Identificación de larvas y formas adultas de especies en  casos de miasis.
      • Identificación morfológica de artrópodos de interés médico.
    • INMUNOLOGIA BACTERIANA, FUNGICA Y PARASITARIA
      • Brucella spp. Ac totales (test de Coombs. Rosa de Bengala).
      • LUES (Treponema palidum). RPR (AL), IgM (ELISA), FTA (IFI) y VDRL.
      • Legionella pneumophila. IgG/IgM (IF).
      • Mycoplama pneumoniae. IgG/ IgM (EIA).
      • Chlamydophila pneumoniae. Ig G/ IgM (EIA).
      • Chlamydophila psitacci. IgG/ IgM (IFI)
      • Coxiella burnetti. IgG/ IgM (IFI). Fases I y II
      • Ricketsia conorii. IgG/ IgM (IFI).
      • Borrelia spp .Ac totales (SV). IgG/IgM (EIA).Inmunoblot G/M
      • Helicobacter Ig G (EIA)
      • Candida albicans. Ac antimicelio (IFI).
      • Detección mediante IP de anticuerpos en suero frente a antígenos de Aspergillus fumigatus.
      • Toxoplasma gondii.Ig M (ELFA) - Ig G (ELFA). Toxoplasmosis avidez.
      • Entamoeba spp.Ac totales (IFI)
      • Leishmania spp. Ac totales (IFI)
      • Plasmodium spp. Ac totales (IFI)
      • Hidatidosis. Ac totales. (EIA)
      • Leptospira (HA/ IFI)
      • Para llevar a cabo dichos estudios la sección de serología cuenta con las siguientes técnicas:

        • IF Inmunofloorescencia
        • IFI Inmunofluorescencia indirecta
        • EIA Enzimoinmunoensayo
        • AL Aglutinación con Latex
        • HA Hemaglutinación/SV sistema Vidas
        • F Floculación
        • IB Inmunoblot
        • IP Inmunoprecipitación.
    • VIROLOGIA
      • Virus de la Inmunodeficiencia Humana (VIH): Detección de antigeno/anticuerpo (QL), Confirmación (EID y/o WB), Carga viral (RT-PCR tr). Genotipado Viral y proviral para estudio de resistencias en Retrotranscriptasa, Proteasa, Integrasa, gp41 y gp120 por SEQ. Estudio de tropismo viral y proviral por SEQ. Subtipado viral por SEQ y Filogenia. Prueba rápida (IC)
      • Virus de la Inmunodeficiencia Humana tipo2 (VIH2): Detección de antigeno/anticuerpo (QL), Confirmación (EID y/o WB). Prueba rápida (IC).
      • Virus linfotrópico humano tipo 1: Detección de anticuerpos (QL), Confirmación (EID). Detección proviral.
      • Virus linfotrópico humano tipo 2: Detección de anticuerpos (QL), Confirmación (EID). Detección proviral.
      • Citomegalovirus [CMV] : Detección genotípica : PCR t-real. IgG/IgM (EIA)
      • Virus Herpes Simplex (VHS1 y VHS2). Ag-IF. Detección genómica: PCR t-real. Ac IgG/IgM (QL)
      • Virus Varicela Zoster (VVZ): Ag-IF.  Detección genómica: PCR. Ac IgG/IgM
      • Virus Herpes Humano tipo 6.(VHH 6). Detección genómica: PCR
      • Virus de Epstein-Barr [EBV]: Detección genómica: PCR t-real. Ac VCA-IgG, VCA-IgM y EBNA IgG (QL)
      • Adenovirus: C. convencional, Ag-IF. Ac IgG/ IgM (EIA)
      • Virus relacionados con las gastroenteritis (Adenovirus, Rotavirus, Norovirus, Astrovirus).  Ag (IC).
      • Virus Respiratorio Sincitial (VRS): C. convencional, Shell-vial, Ag-IF, detección genómica: PCR.
      • Virus de la Influenza A: C. convencional, Shell-vial, Ag (IF), detección genómica: PCR t real.
      • Virus de la influenza H1N1 : detección genómica: PCR t real.
      • Virus de la Influenza B: C. convencional, Shell-vial, Ag (IF). detección genómica: PCR.
      • Virus Parainfluenza 1, 2, 3 C. convencional, Shell-vial, Ag (IFI).
      • Enterovirus :C. convencional. detección genómica: PCR-real.
      • Virus JC: Detección genómica: PCR
      • Virus BK: Detección genómica: PCR
      • Parvovirus B 19: Detección genómica: PCR. Ac: IgG/IgM.
      • Virus de la Hepatitis A. Ac IgG / IgM (QL).
      • Virus de la Hepatitis B  Detección de antigenos (HBsAg y HBeAg) y anticuerpos (AntiHBc, AntiHBcIgM, AntiHBe y AntiHBs cuantitativo) (QL), Confirmación de HBsAg por neutralización (QL), Cuantificación de HBsAg (QL), Carga viral (PCR tr). Genotipado Viral para estudio de resistencias en Retrotranscriptasa y Superficie por SEQ. Genotipado viral para estudio de mutaciones en PC y PBC por SEQ. Genotipado viral por SEQ y Filogenia y también disponible por hibridación reversa en coinfecciones (LiPA). Prueba rápida (IC).
      • Virus de la Hepatitis C, Detección de anticuerpo (QL), Confirmación (EID), Carga viral (RT-PCR tr). Ag/Ac. Genotipado Viral por hibridación reversa. Pendiente de aprobación SNPs en IL28B.
      • Virus de la hepatitis D (delta): Detección de anticuerpos IgG/IgM (EIA), Detección del ARN-VHD (RT-PCR). Genotipado Viral por SEQ y Filogenia.
      • Virus de la hepatitis E: Detección de anticuerpos IgG/IgM (EIA), Detección del ARN-VHE (RT-PCR). Genotipado Viral por SEQ y Filogenia.
      • Virus del Sarampión: Cultivo convencional, Shell-vial, detección genómica:PCR. Ac IgG/IgM(EIA)
      • Virus de la Rubéola. Ac: IgG/ IgM (QL) y dterminación de Avidez (EIA)
      • Virus de la Parotiditis: C. convencional, Shell-vial, detección genómica: PCR t-real. Ac IgG/IgM (EIA)
      • Dengue: Ac IgG/IgM
      • Para llevar a cabo dichos estudios la sección de serología cuenta con las siguientes técnicas:

        • IC inmunocromatografía
        • IF Inmunofluorecencia
        • QL Quimioluminiscencia
        • EID Enzimoinmunodot
        • PCR Técnicas de amplificación genómica: Reacción en cadena de la polimerasa
        • Técnicas de cuantificación del nº de genomas virales (carga viral) mediante Branched DNA de Quiron incluyendo VHB, VHC y VIH
        • Aislamiento de virus de importancia clínica en cultivos celulares en monocapa o suspensión, según métodos tradicionales y rápidas -shell-vial-.
        • Ensayos de sensibilidad a antivirales:
          • Sensibilidad genotípica (VIH, CMV) por secuenciación.
          • Genotipado por hibridación con sondas específicas
          • Genotipado por secuenciación
 

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Cidadanía, Profesionais, Persoal licenciado sanitario, Investigadores/as

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Oferta asistencial, Servizos sanitarios, Información sobre saúde, Formación e Docencia

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